Caracterização da resistência a antibióticos e fatores de virulência em bactérias isoladas de amostras da Laguna de Tramandaí

Abstract

Os ambientes aquáticos têm demonstrado grande importância quanto à aquisição e disseminação de resistência à antimicrobianos em bactérias. Frente a este problema, esse estudo teve como objetivo determinar o perfil de suscetibilidade a antimicrobianos, verificar a presença de genes de resistência a beta-lactâmicos (blaOXA-48, blaKPC, blaTEM, blaGES) e caracterizar o perfil de virulência através da análise da produção de biofilme e presença de fímbrias dos tipos 1 e 3 de bactérias de diferentes espécies provenientes da Laguna de Tramandaí. Trinta e sete isolados foram identificados através da análise por MALDI-TOF como pertencentes às espécies S. marcescens, P. aeruginosa, M. morganii, C. freundii, P.alcalifaciens, E. coli e E. faecium. Todos os isolados foram suscetíveis ao Imipenem e todos os Gram-negativos apresentaram suscetibilidade à piperacilina tazobactam, ceftazidima e cefepima, assim como os Gram-positivos à nitrofurantoína, gentamicina e tigeciclina. As maiores taxas de resistência a antimicrobianos entre as bactérias Gram-negativas foram para ampicilina (75,7%), amoxicilina-ácido clavulânico (66,6%) e cefoxitina (39,4%). Dos quatro isolados Gram-positivos, dois mostraram-se resistentes à ampicilina, norfloxacina e estreptomicina e um à vancomicina. Apesar de 81% das bactérias apresentarem multirresistência, os isolados analisados não apresentaram os genes de resistência pesquisados. Todas as bactérias foram formadoras de biofilme e 43,2% foram forte formadoras. Aproximadamente metade (51,5%) dos isolados Gram-negativos apresentaram uma das fímbrias analisadas (tipo 1 ou tipo 3), sendo a fímbria do tipo 3 a mais recorrente. A elevada porcentagem de isolados que apresentaram multirresistência atenta para o risco de disseminação de resistência no ambiente pesquisado e caracterizam a laguna como um possível reservatório de bactérias resistentes.

Aquatic environments have been shown to be important for the acquisition and spread of antimicrobial resistance in bacteria. This study aimed to determine the antimicrobial susceptibility profile, verife the presence of beta-lactam resistance genes (blaOXA-48, blaKPC, blaTEM, blaGES), and characterize the virulence profile through the analysis of biofilm production and presence of fimbriae types 1 and 3 of bacteria of different species from Tramandaí Lagoon. 37 isolates were identified by MALDI-TOF analysis as belonging to the species S. marcescens, P. aeruginosa, M. morganii, C. freundii, P.alcalifaciens, E. coli and E. faecium. All isolates were susceptible to Imipenem and all Gram-negative isolates were susceptible to piperacillin tazobactam, ceftazidime and cefepime, as well as Gram-positive to nitrofurantoin, gentamicin and tigecycline. The highest antimicrobial resistance rates among Gram-negative bacteria were for ampicillin (75.7%), amoxicillin-clavulanic acid (66.6%) and cefoxitin (39.4%). Two Gram-positive isolates were resistant to ampicillin, norfloxacin, streptomycin and one isolate was vancomycin resistant. Although, 81% of the bacteria presented multiresistance, the isolates analyzed did not show the resistance genes searched. All bacteria were biofilm-forming and 43.2% were strong-forming. About half of the isolates (51,5%) presented one of the analyzed fimbria (type 1 or type 3) and type 3 fimbria was the most recurrent. The high percentage of isolates that presented multiresistance aware to the risk of antibiotic resistance spread in the studied environment and characterize the lagoon as a possible reservoir of resistant bacteria.